
核酸提取或纯化试剂
¥148.00
CWY012S
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保存条件 | 运输条件 |
---|---|
0-35℃ | 常温 |

(1)裂解不完全:适当延长步骤4孵育时间,在孵育期间增加颠倒混匀次数;
(2)样品量太多:调整样品投入量,并按照比例加入裂解缓冲液和蛋白酶K。
若下游实验对pH值或EDTA敏感,可采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5(可用NaOH调节),pH值低于7.0会显著降低洗脱效率。如需长期保存洗脱产物,推荐使用洗脱缓冲液洗脱,并于-20℃保存。
如下游实验对RNA污染较敏感,可加入4 μL无DNA酶的RNase A(100 mg/mL)
不可以。
1. A260/A280比值低(<1.7)。原因:蛋白或乙醇残留导致污染。解决方法:
1) 确保裂解充分:使用前请检查裂解缓冲液是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请将裂解缓冲液于56℃水浴孵育重新溶解。
2) 去除乙醇残留:吸附柱空离2分钟后将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干。
2. A260/A280比值高(>2.0)。原因:RNA残留或核酸降解。
解决方法:
1) 可向其中加入4 μL RNase A(100 mg/mL)溶液,震荡15秒,室温放置5 分钟。RNase A本试剂盒并未提供,如需要可单独向本公司订购,货号:CW0601S。
2) 避免降解:使用新鲜样本,避免样本反复冻融。
3) 优化洗脱:若采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5(可用NaOH调节)。
(1)应尽可能选择新鲜的样本;
(2)样本起始投入量不要超过所用方法的推荐范围;
(3)样品保存时要尽可能的避免反复冻融;
(4)样本应进行充分裂解:加入裂解缓冲液后颠倒混匀15次,剧烈震荡至少1分钟,可适当延长孵育时间;
(5)漂洗缓冲液1和漂洗缓冲液2中无水乙醇添加量不准确,应按照试剂瓶标签正确添加无水乙醇;
(6)洗脱不充分: DNA 产物洗脱的时候,预热洗脱液并滴加在膜中央位置,尽可能的覆盖整个吸附膜,增加洗脱体积或者二次洗脱也可增加产量。